Nsaibia Mohamed Jalloul
Ph. D. en Médecine Moléculaire
Permis de conduire
Laval (H7W 1T6) Canada (Québec)
Situation professionnelle
En fin de contrat
En recherche active
Présentation
Grandes compétences dans divers domaines de recherche en biologie. Expérience de recherche dans le milieu universitaire, hospitalier et pharmaceutique. Gestion de plusieurs projets de recherche multidisciplinaires, gestion du temps, analyse et résolution de problèmes. Excellente communication et bonne organisation. Capable de superviser une équipe et de travailler de façon autonome.
Responsable, bon esprit d’équipe, capable d’apprendre rapidement, facilité d’adaptation à différentes situations, précision dans l’accomplissement des tâches
Responsable, bon esprit d’équipe, capable d’apprendre rapidement, facilité d’adaptation à différentes situations, précision dans l’accomplissement des tâches
- 2017-2019: Bourse Mitacs (Programme Accélération)
- 2015-2018: Bourse pour publication scientifique 1er auteur de la Faculté de médecine de l’Université Laval
- 2015: Prix d’excellence du Fonds de la recherche en santé du Québec pour meilleure présentation affiche lors de la journée de la recherche de l’Institut universitaire de cardiologie et de pneumologie de Québec
- 2015: Prime de réussite du cours d'anglais supérieur au classement du test TOEIC
- 2015: Bourse de dépannage Ven-Huguette-Anil-Murthy pour les étudiants au doctorat.
- 2014-2016 Bourse de formation au doctorat
- 2014: Bourse de Programme d’exemption des droits de scolarités supplémentaires
- 2014: Bourse d’admission au doctorat de l’Université Laval
- 2012-2013: Bourse de stage de recherche à l’étranger du fonds du Ministère de l'Enseignement supérieur et de la Recherche scientifique de la Tunisie
- Français (avancé)
- Anglais (intermédiaire )
- Applications de Microsoft : Word, Excel, PowerPoint, Outlook et End note
- Logiciels d’analyses statistiques: JMP, GraphPad Prism, SPSS et Sigma Plot
- Logiciels bio-informatiques : BLASTS et FASTA
- Logiciels pour l’analyse des images : Image J, Image Lab, Adobe illustratoret, Navios et Kaluza
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Culture cellulaire: congélation, isolation, maintenance et traitements de lignées cellulaires et de cellules primaires.
• Culture cellulaire: congélation, isolation, maintenance et traitements de lignées cellulaires et de cellules primaires.
• Maitrise les techniques de biologie moléculaire: Extraction d’ARN et d’ADN, PCR en temps réel (q-PCR), PCR, ELISA et Western-blot.
• Digestion enzymatique, clonage, transfection siRNAs/Vecteurs, dosage et purification des protéines
• Activité du promoteur luciférase (Reporter Assays) et BRET assay
• Cytométrie en flux (FACS) : analyse du cycle cellulaire
• Maitrise les techniques d’histologie, d’immunohistochimie et immunofluorescence.
• Dosage des biomarqueurs plasmatiques et sériques par ELISA et des essais enzymatiques.
• Immunoprécipitation de la chromatine (Chip Assay) et interactions entre les protéines.
• Manipulation des animaux de laboratoire (rat et souris) : injection et gavages; prises de sang, dissection et prélèvement des organes (analyses ex vivo).
• Connaissance des BPL/GLP -
Maitrise les techniques de biologie moléculaire: Extraction d’ARN et d’ADN, PCR en temps réel (q-PCR), PCR, ELISA et Western-blot.
Culture cellulaire: congélation, isolation, maintenance et traitements de lignées cellulaires et de cellules primaires.
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Activité du promoteur luciférase (Reporter Assays) et BRET assay
Maitrise les techniques de biologie moléculaire: Extraction d’ARN et d’ADN, PCR en temps réel (q-PCR), PCR, ELISA et Western-blot.
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Cytométrie en flux (FACS) : analyse du cycle cellulaire
Digestion enzymatique, clonage, transfection siRNAs/Vecteurs, dosage et purification des protéines
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Maitrise les techniques d’histologie, d’immunohistochimie et immunofluorescence.
Activité du promoteur luciférase (Reporter Assays) et BRET assay
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Dosage des biomarqueurs plasmatiques et sériques par ELISA et des essais enzymatiques.
Cytométrie en flux (FACS) : analyse du cycle cellulaire
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Immunoprécipitation de la chromatine (Chip Assay) et interactions entre les protéines.
Maitrise les techniques d’histologie, d’immunohistochimie et immunofluorescence.
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Manipulation des animaux de laboratoire (rat et souris) : injection et gavages; prises de sang, dissection et prélèvement des organes (analyses ex vivo).
Dosage des biomarqueurs plasmatiques et sériques par ELISA et des essais enzymatiques.
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Connaissance des BPL/GLP
Immunoprécipitation de la chromatine (Chip Assay) et interactions entre les protéines.
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Manipulation des animaux de laboratoire (rat et souris) : injection et gavages; prises de sang, dissection et prélèvement des organes (analyses ex vivo).
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Connaissance des BPL/GLP
- Certificat de formation en cyrtométrie en flux à l’INRS (février 2018)
- Certificat de formation théorique et pratique sur l’utilisation des animaux de laboratoire en recherche et en enseignement (mai 2014).
- Certificat de formation en santé et sécurité du CRIUCPQ (janvier 2014).
- Certificat de participation aux différents ateliers des journées de formation scientifique et pédagogique (mars 2013).
- Certificat de formation en Création d'entreprises et formation d'entrepreneurs (CEFE) (juin 2013).
- Certificat de compétences en langue française (niveau avancé) à l’institut des langues appliquées de Moknine-Monastir. (Octobre 2013).
- Santé et Sécurité au Travail (2018)
- Immunologie cellulaire
- Biologie cellulaire et et moléculaire
- Biochimie (Enzymologie)
- Techniques courantes en médecine moléculaire
- Signalisation cellulaire
- Microbiologie
